原位杂交检测HPV6/11感染在诊断尖锐湿疣中的应用--《江西医药》2006年01期
原位杂交检测HPV6/11感染在诊断尖锐湿疣中的应用
【摘要】：目的研究原位杂交法检测HPV6/11对诊断尖锐湿疣的价值。方法对47例尖锐湿疣进行HE染色及原位杂交HPV-DNA检测。结果典型的挖空细胞是表层或中层的鳞状细胞,伴有单个或偶尔为多个增大、深染和皱缩的细胞核,核周有一明显的透明区或“空晕”,紧靠周围胞浆增厚带。原位杂交HPV-DNA法检测阳性率为95.7%(45/47)。阳性反应呈深蓝色,广泛出现于棘层中上部、颗粒层和角化不全细胞核内,在角化不全层内被挤压的细胞核中尚可见到阳性表达。结论典型的挖空细胞是尖锐湿疣病理诊断的特征性细胞。原位杂交法可以提高HPV6/11的检测率,有助于尖锐湿疣的诊断。
【作者单位】：
【关键词】：
【分类号】：R752.53【正文快照】：
尖锐湿疣(Condyloma Acuminatum,CA)是一种较为常见的性传播疾病,近年来在我国发病有明显升高趋势,它的发生和人乳头状瘤病毒(HPV)6/11型关系较密切[1,2]。病理诊断主要依靠组织学形态观察和免疫组化检查。对于组织学可疑而免疫组化检查结果阴性的病例,又不能完全排除尖锐湿
欢迎：、、)
支持CAJ、PDF文件格式，仅支持PDF格式
【引证文献】
中国期刊全文数据库
李洪安;蒋金芳;李锋;;[J];农垦医学;2006年04期
郭琴;宋红;;[J];山西医药杂志;2008年05期
孙丽君;蔡路兵;;[J];肿瘤学杂志;2012年03期
中国硕士学位论文全文数据库
郭琴;[D];山西医科大学;2008年
【参考文献】
中国期刊全文数据库
黄莺,王康敏,何长武,靳耀锋,强雷;[J];中国皮肤性病学杂志;2002年04期
吴文中,佟菊贞,林汉良,吴惠茜,张书岭;[J];中国皮肤性病学杂志;2004年04期
【共引文献】
中国期刊全文数据库
张武;王萍;李春峰;;[J];江西医学院学报;2006年03期
张武;王昕;李铮;刘静;李淑燕;张海燕;;[J];实用皮肤病学杂志;2008年04期
吴文中,佟菊贞,林汉良,吴惠茜,张书岭;[J];中国皮肤性病学杂志;2004年04期
宫宏斌;;[J];中国现代药物应用;2010年15期
吴文中,佟菊贞,林汉良,吴惠茜,张书岭;[J];中国中西医结合皮肤性病学杂志;2005年03期
中国博士学位论文全文数据库
吴剑波;[D];中国协和医科大学;2005年
【同被引文献】
中国期刊全文数据库
何立智,谢敏;[J];国外医学.遗传学分册;2000年03期
廖丹梅;黄明春;;[J];广西医学;2006年03期
黄明春;李惠珍;廖丹梅;甘柏柳;覃军;王燕娇;陆和屏;叶朝阳;;[J];广西医学;2006年11期
王家壁，刘跃华，曹仁烈，纪黎明，傅志宜，刘子文，赵广，车乃增;[J];临床皮肤科杂志;1996年01期
刘岿然,林蓓,张淑兰;[J];肿瘤防治杂志;2003年11期
郭琴;宋红;;[J];山西医药杂志;2008年05期
袁永辉,吴人亮,王曦,陈多恩;[J];陕西医学杂志;2004年07期
王喜梅;陈良富;李树平;孙雷;郑仁恕;;[J];实用癌症杂志;2005年06期
叶大风;[J];实用肿瘤杂志;2003年03期
陈利友;石一复;周彩云;张义龙;陈晓端;;[J];实用肿瘤杂志;2005年06期
【二级引证文献】
中国期刊全文数据库
孟丽;;[J];实用医技杂志;2012年01期
孙丽君;蔡路兵;;[J];肿瘤学杂志;2012年03期
【二级参考文献】
中国期刊全文数据库
孙建方;刘季和;;[J];国外医学.皮肤病学分册;1991年01期
黄莺,王康敏,何长武,靳耀锋,强雷;[J];中国皮肤性病学杂志;2002年04期
李峰,方伟岗,郑杰,由江峰,钟镐镐,衡万杰,吴秉铨;[J];中华病理学杂志;1998年05期
龚向东,叶顺章,张君炎,张国成,邵长庚,梁国钧,姜文华,夏强,王全佩;[J];中华皮肤科杂志;2002年03期
【相似文献】
中国期刊全文数据库
刘喜波;;[J];江西医药;2006年01期
黄文亭;陈汶;曹智;宋艳;杨琳;沈贵华;郭蕾;李凌;张洵;石菊芳;;[J];癌症进展;2010年02期
潘华雄;吴翠环;周晟;徐毅;王秀红;黄邦杏;王智园;;[J];华中科技大学学报(医学版);2006年04期
徐虹，刘玉玲，郑香玲，孙玉珍，王琳，王书才，周丽莉;[J];诊断病理学杂志;1995年04期
严文杰;黄熙;;[J];山东医药;2011年12期
郑英;;[J];中国实用妇科与产科杂志;1996年03期
李玉红,张瑞祥,齐洁敏,马卫军,张玉娟,刘静,张兰芬;[J];承德医学院学报;1998年03期
兰建云;邵伟伟;袁苏娟;胥传海;;[J];医学研究生学报;2010年04期
黄宗明,李青,杨守京,晏培松,胡沛臻,马福成;[J];武警医学;2001年07期
何明珊;;[J];华夏医学;2008年02期
中国重要会议论文全文数据库
汤晓飞;欧阳喈;高木实;;[A];中华口腔医学会第七届全国口腔病理学术会议论文摘要汇编[C];2006年
胡越;凌志强;刘洋;朱雪琼;;[A];第四届长三角妇产科学术论坛暨浙江省2009年妇产科学术年会论文汇编[C];2009年
张慧敏;章晓鹰;潘祥龙;徐平;;[A];2011全国中西医结合皮肤性病学术会议论文汇编[C];2011年
张慧敏;章晓鹰;潘祥龙;徐平;;[A];2011全国中西医结合皮肤性病学术会议论文汇编[C];2011年
杨建林;柳长柏;李丹莉;;[A];第六届全国免疫学学术大会论文集[C];2008年
王建捷;靳家玉;冯玲;郝薇;张玲;;[A];中华医学会第九次全国妇科肿瘤学术会议论文汇编[C];2006年
邹媛;郭兴中;方国伟;;[A];中华医学会第八次全国检验医学学术会议暨中华医学会检验分会成立30周年庆典大会资料汇编[C];2009年
朱明昭;;[A];中国生物工程学会第三次全国会员代表大会暨学术讨论会论文摘要集[C];2001年
沈云岳;刘华;王蕾;高锋;;[A];中华医学会第八次全国检验医学学术会议暨中华医学会检验分会成立30周年庆典大会资料汇编[C];2009年
刘方;王家璧;刘跃华;左亚刚;王惠珍;蔓小红;;[A];2003中国中西医结合皮肤性病学术会议论文汇编[C];2003年
中国重要报纸全文数据库
北京地坛医院感染中心副主任医师
刘彦春;[N];健康报;2010年
北京协和医院妇产科主任医师 谭先杰;[N];健康时报;2010年
黄冰;[N];大众卫生报;2004年
张中桥;[N];健康报;2006年
张中桥;[N];中国医药报;2006年
郑莉丽;[N];健康报;2009年
衣晓峰;[N];大众卫生报;2004年
李天舒;[N];健康报;2008年
王丹;[N];健康报;2010年
刘志刚;[N];家庭医生报;2005年
中国博士学位论文全文数据库
梁思;[D];中国协和医科大学;2010年
李淑英;[D];河北大学;2010年
缪若羽;[D];中国协和医科大学;2008年
李远宏;[D];中国医科大学;2001年
赵蔚明;[D];山东大学;2004年
邱爱东;[D];吉林大学;2006年
张魏芳;[D];山东大学;2010年
徐道华;[D];重庆医科大学;2005年
李艳佳;[D];河北医科大学;2005年
杨怡卓;[D];中国人民解放军军医进修学院;2008年
中国硕士学位论文全文数据库
邵为荣;[D];吉林大学;2006年
卢五迅;[D];厦门大学;2006年
逯克娜;[D];北京中医药大学;2008年
李博;[D];山西医科大学;2011年
高玉华;[D];中国医科大学;2005年
李公祥;[D];青岛大学;2005年
毛静月;[D];第二军医大学;2008年
王彤;[D];中国人民解放军军医进修学院;2005年
李菁菁;[D];新疆大学;2008年
郑舟;[D];厦门大学;2008年
&快捷付款方式
&订购知网充值卡
400-819-9993
《中国学术期刊（光盘版）》电子杂志社有限公司
同方知网数字出版技术股份有限公司
地址：北京清华大学 84-48信箱 知识超市公司
出版物经营许可证 新出发京批字第直0595号
订购热线：400-819-82499
服务热线：010--
在线咨询：
传真：010-
京公网安备75号状态：就诊前
咨询标题：TCT见挖空细胞，HPV高危型阳性
h***提交于
您好，宫颈癌前筛查是年龄21岁以上或有性生活史做宫颈TCT，30岁以上查HPV
（大夫郑重提醒：因不能面诊患者，无法全面了解病情，以上建议仅供参考，具体诊疗请一定到医院在医生指导下进行！）
梁玉杰大夫本人 发表于
挖空细胞就是HPV感染。
（大夫郑重提醒：因不能面诊患者，无法全面了解病情，以上建议仅供参考，具体诊疗请一定到医院在医生指导下进行！）
梁玉杰大夫本人 发表于
容易导致宫颈癌及宫颈癌前病变的高危HPV16.18.31.32
（大夫郑重提醒：因不能面诊患者，无法全面了解病情，以上建议仅供参考，具体诊疗请一定到医院在医生指导下进行！）
梁玉杰大夫本人 发表于
HPV持续，长期感染容易导致宫颈病变，我国高危型为16型
（大夫郑重提醒：因不能面诊患者，无法全面了解病情，以上建议仅供参考，具体诊疗请一定到医院在医生指导下进行！）
梁玉杰大夫本人 发表于
状态：就诊后
找梁玉杰大夫就诊的于***患者，成功报到医生诊断疾病：就诊类型：门诊最近一次看门诊日期：门诊/住院病历号：最近一次大夫门诊做的检查项目：最近一次大夫门诊时给您的处置方案：
（大夫郑重提醒：因不能面诊患者，无法全面了解病情，以上建议仅供参考，具体诊疗请一定到医院在医生指导下进行！）
梁玉杰大夫本人 发表于
科室: 妇产科
职称: 主任医师 教授
擅长: 擅长妇科内分泌，不孕症，异常子宫出血，子宫肌瘤，子宫内膜异位症，子宫腺肌病，卵巢肿瘤，宫颈病变诊治。各项妇科微创手术：如宫腔镜、腹腔镜及阴式手术等。
梁玉杰，妇产科主任医师，现就职于温州医科大学附属乐清市人民医院妇科，温州医科大学兼职教授。温州市妇科...您所在位置：
&& 文章详情
人乳头瘤病毒检测方法及其应用的研究进展
作者：庞伟鸿，刘红杏，陈
忠&&&&作者单位：广东省湛江中心人民医院检验中心，广东湛江 524037
人乳头瘤病毒的检测对预防和筛查宫颈癌是至关重要的。检测HPV的实验方法有很多且不断在完善和发展。HPV的检测主要采用传统细胞学和分子生物学的方法。本文对HPV检测方法的现状进行了综述。
【关键词】& 人乳头瘤病毒；细胞学；分子生物学；基因型；综述文献
人乳头瘤病毒 （HPV）是一种可引起人类皮肤和黏膜组织良性及恶性肿瘤的病毒。它是一种双链环状DNA病毒，由早期基因、晚期基因（晚期基因L1和L2分别编码主要衣壳蛋白与次要衣壳蛋白［1］）和一个不翻译的上游调节区三部分组成。迄今为止，已发现的HPV有100多个型别，各型别与体内特定感染部位和病变有关，其中40多个型别与人类生殖道疾病有关；而高危型HPV感染是子宫颈癌及癌前病变发病的必要条件，99.8%的子宫颈癌患者存在高危型HPV感染［2］，因此HPV DNA的检测和分型对了解相关疾的病情，特别是对女性生殖道肿瘤的癌情预报具有重要意义。目前，对于HPV的检测和基因型分型的研究进展很快，实验技术不断完善，本文就HPV检测进展作一综述。
&&& 1& 细胞学检测方法
&&& 1.1& 细胞学检测
&&& 细胞学检测HPV感染是一种简便易行而且经济的方法，适合大规模的普查和筛查，其方法是在患区取材，采用巴氏染色，可见由HPV引起的&挖空细胞&。虽然&挖空细胞&对诊断HPV感染有特异性，但其敏感性低，假阴性率高。近年来出现了薄层液基技术和涂片自动检测技术，可大大提高检测的特异性和敏感性，其方法主要有TCT法和PAPNET法。TCT技术是通过将宫颈拭子收集的标本洗入Thinprep PC缓冲液中，经处理后制成薄层细胞涂片并染色；该方法被美国FDA批准用于筛查HSIL和LSIL［3］。PAPNE技术是在计算机辅助下对宫颈细胞学涂片进行自动化快速图像分析。Miaz?Montes等［4］报道，在液基细胞学检查证实为不典型腺细胞（AGC）的患者中，高危型HPV的阳性率为40.5%。但这些方法的费用高，操作技术要求严格。
&&& 1.2& 免疫组化（IHC）
&&& IHC主要检测HPV抗原，其原理是通过抗L1蛋白抗体与相对应的HPV外壳蛋白反应来检测HPV。方法是取少量病变组织制成涂片，用特异性抗人类乳头瘤病毒的抗体进行结合反应作染色，操作简单且能定位，但存在假阴性及低敏感性等缺点。分析其原因有：（1）现有的抗体多针对病毒衣壳蛋白，当病毒整合后，编码衣壳蛋白部分基因常有缺失；（2）HPV整合入宿主细胞后，转录的mRNA结合一段宿主基因导致其抗原性改变；（3）取样部位的准确性。Schneider［5］等的研究结果显示，IHC的阳性检出率远低于PCR。另外，有学者应用免疫组化S?P方法检测P16INK4A蛋白在不同宫颈病变中的表达情况，并与已知阳性的宫颈癌切片作为对照，当细胞核或细胞质内出现棕黄色颗粒时为P16INK4A表达阳性［6］，发现患者P16INK4A表达的强弱与高危型HPV的病毒是密切相关的。而HPV感染在宫颈癌的发生中起重要作用，几乎所有宫颈癌及癌前病变中都可检测到HPV的存在［7］。
&&& 2& 分子生物学技术
&&& 2.1& DNA印迹杂交（SBH）
&&& SBH是HPV基因分析的金标准，其方法是利用碱基互补的原理，用标记的核酸探针检测HPV的核酸，并对病毒DNA进行分型；这项技术曾用于HPV的早期研究，但此方法敏感性低、耗时，需要大量高度纯化的DNA，而且需要新鲜样本，故不适用于临床HPV分型的检测应用。
&&& 2.2& 原位杂交技术(ISH)
&&& ISH是20世纪60年代发展起来的检测技术，主要应用于染色体基因的定位。其原理是应用带有放射性同位素标记已知碱基序列DNA或RNA作为探针，与待测核酸（RNA或DNA）进行杂交，然后用反射显影等方法予以显示，在光镜下就可观测待测RNA或DNA的存在与定位。原位杂交用于研究宫颈组织细胞内是否含有HPV的DNA，不需要从组织细胞中提取核酸，能在成分复杂的组织中进行单一细胞的研究而不受组织中细胞内其它成分的影响，并可完整地保持组织和细胞的形态。但该法有灵敏度较低、实验周期长、操作复杂、实验过程易受到多方面条件限制、无法同时检测多份标本等缺点。而在此基础上发展起来的分支DNA(b?DNA)原位杂交法的敏感性较普通原位杂交法高，一个细胞中有1?2个拷贝的DNA时就能被检测出来，而且能非常敏感地区分出HPV?16和HPV?18，有精确的定位功能。该法能检测整个细胞和组织样本中的DNA和mRNA，但检测范围较窄。目前该技术主要应用于科研方面，尚无快速准确的临床筛查诊断产品［8］。还有一种是利用荧光原位杂交法（FISH）检测高度鳞状上皮病变标本中HPV& E6、E7 Mrna，结果显示其灵敏度为83.3%，特异度为91.3%［9］。
&&& 2.3& 杂交捕获试验(HC)
&&& HC是利用化学发光对抗体捕获的信号加以放大的方法，可检测13种高危型HPV。后来发展的第二代杂交捕获试验（HC?Ⅱ）技术，采用RNA探针与对应基因进行杂交，形成RNA?DNA混合物被标记有特异性单克隆抗体的微孔板捕获，通过加入底物进行化学发光比色，光的强弱对应于标记物碱性磷酸酶含量的高低，从而确定待测的HPV DNA的含量［10］，是目前唯一通过美国FDA认证的可用于临床的HPV DNA分型手段。该技术使用两种特异性探针：高危型探针检测HPV16、18、31、33、35、39、45、51、52、56、59和68型，低危型探针检测HPV6、11、42、43、44型，方法标准化，检测效率高。Petry等［11］对德国8466例HPV患者进行HCⅡ检测，发现对宫颈上皮内瘤变Ⅱ级（CIN Ⅱ）HC?Ⅱ检测的敏感性远较常规细胞学的高，前者是97.8%而后者是43.5%，而且HC?Ⅱ检测对其的特异性、阳性预测值和阴性预测值分别为95.3%、10.9%和100%,与细胞学检测基本吻合。另有报道HC?Ⅱ对于检测CIN Ⅱ、Ⅲ和浸润癌中的HPV，其敏感度为66%至100%，特异度为61%至96%［12］。缺点是只能区分高危型与低危型；除此之外，HCⅡ作为杂交反应，存在交叉杂交的问题，即与不在混合探针中的其他HPV型起交叉反应引起假阳性结果而降低特异性。
&&& 2.4& 聚合酶链反应（PCR）
&&& PCR技术采用DNA聚合酶催化特异性引物来选择性扩增HPV的 DNA，然后进行检测，一般分为型特异性PCR和通用引物PCR。型特异性PCR是针对单一型别HPV［13］设计的型特异性引物进行PCR扩增，一次试验只检测到一种基因型；如使用通用引物可检测多个HPV的基因型。Perrons等［14］用SPF10引物克服了第二代Digene杂交捕获法不能分型的特点，可检测HPV的多个高危型别。通用引物在PCR扩增过程中易发生引物错配，此时可利用较低的退火温度，防止引物与其他型别引物发生错配，从而避免了假阳性的出现。PCR扩增产物检测通常用琼脂糖凝胶电泳，该方法灵敏度较差且结果不易保存；此外也可在一张膜上预先固定能与不同靶序列DNA严格配对的特异性寡核苷酸探针，用斑点杂交方法［15］与PCR扩增产物在特定条件下杂交，经洗膜、显色达到检测多个基因的目的。实时荧光定量PCR与PCR不同之处在于PCR反应体系中除了有针对HPV型特异性引物之外，还加入一个带有荧光标记的荧光探针，利用扩增过程中荧光信号积累实时监测PCR进程，最后通过标准曲线对未知模板进行定量分析。实时荧光定量PCR分单通道与多通道两种，单通道实时荧光定量PCR［16］是在反应中使用一种荧光物质进行示踪，技术难度相对较低，缺点是但每次反应仅能检测一个基因。而分析HPV型别时则需应用多通道实时荧光定量PCR技术［17］，其检测HPV的DNA是通过使用多种具有不同激发/发射波长的荧光物质标记不同或通用特异性探针进行示踪，从而实现在同一反应管内对不同基因型别进行检测。该方法特异性和灵敏度均高，分型的同时还可以准确定量。用实时荧光定量PCR对HPV16阳性的宫颈标本进行检测发现，高度病变组、低度病变组和正常组中DNA复制明显不同，其程度与病变严重程度成正比［18］。但分型检测时工作量大，仪器较贵，限制了其广泛应用。
&&& 2.5& 基因芯片（gene chip）
&&& 基因芯片技术是近年来随着人类基因组计划的研究而发展起来的，其原理是采用原位合成或显微点样技术将许多的DNA探针固化于支持物表面上，产生二维DNA探针阵列，然后与标记的样品进行杂交，通过检测杂交信号来实现快速、并行、高效的检测。经过几年的发展，基因芯片技术已经日趋成熟，目前已有检测20多种基因分型的芯片［19］基因芯片法通过一次性对大量标本进行HPV检测分析，解决了传统核酸印迹杂交技术操作繁杂、自动化程度低、通量低的缺点，灵敏度和特异性相对其他方法较高，阳性率高出荧光定量PCR 6.45%［20］；基因芯片不仅可用于分型，而且可以对多个型别的混合感染情况同时进行监控，较杂交捕获法有优势。另外新近发展的液相芯片技术，是利用Luminex TM100的一个多功能生物芯片分析平台，有机地整合了编码微球、激光技术、应用流体学、最新高速数字信号处理器和计算机运算法则，可对HPV进行定性、定量检测［21］，具有高通量、高灵敏度、速度快等特点。国内学者刘思瑶［22］等使用液相芯片技术同时检测26种HPV亚型并与反向点杂交进行比较，具有更高的敏感性，能更有效地检测HPV多重感染情况。
&&& 3& 结语与展望
&&& HPV的检测在宫颈癌的筛查及其预防具有至关重要的意义。综合各种HPV检测方法，细胞学检查有效但缺乏敏感度，而HPV的DNA检测的灵敏度很高，但其特异性相对低；同时HPV的定量、分型以及检测时机，都成为HPV检测的重要内容。由于不同的HPV型别有不同的致病能力，所以发展HPV基因型的分型方法越来越重要。随着分子生物学技术的发展，各种检测HPV的方法不断涌现，从分子水平上研究HPV感染显得尤为重要。检测方法力求简便及灵敏度与特异性高、成本相对较低；多通道实时荧光定量PCR和日趋成熟的芯片技术将是检测HPV感染的发展趋势之一。选择先进的HPV 分析技术同时检测HPV型别与病毒载量，可为早期诊断女性生殖道HPV的感染，了解疾病进程及判断预后提供可靠数据，从而减少与预防宫颈癌的发生，具有非常重要的意义。
【参考文献】
& ［1］ Steenbergen R D, de Wilde J, Wilting S M,et al.HPV?mediated transfor? mation of the anogenital tract ［J］. J Clin Virol,2005,32 Suppll:S25?33.
［2］ Tarkkanen J, Auvinen E,Nieminen P,et al.HPV DNA testing as an adjunet in the management of patients with low grade cytological lesions in Finland ［J］. Acta Obstet Gynecol Scand,):367?372.
［3］ Obwegeser J H, Brack S. Does liquid?based technology really improve detection of cervical neoplasia? A prospective,randomized trial comparing the thinprep pap test with the conventional pap test, including follow?up of HSIL cases ［J］. Acta Cytol,):709?714.
［4］ Miaz?Montes T P,Farinola M A,Zahurak M L,et al.Clinical utility of atypical glandular cells(AGC) classification:cytohic comparison and relationship to HPV results ［J］. Gynecol Oncol,): 366?371.
［5］ Schneider J,Neu K.Velcovsky H G,et al.Tumor M2?pyruvate kinase in the follow?up of inoperable lung cancer patients:a pilot study ［J］. Cancer Lett,):91?98.
［6］ Negri G, Egarter?Vigl E, Kasal A,et al.p16INK4a is a useful marker for
the dignosis of adenoearcinoma of the cervix uteri and its precursors:
an immunohistochemical study with immunocytochemical correlations
［J］. Am J Surg Pathol,):187?193.
［7］ Meyer J L, Hanlon D W, Andersen B T,et al.Evaluation of p16INK4a expression in ThinPrcp cervical specimens with the CINtec p16INK4a assy:correlation with biopsy follow?up results ［J］. Cancer,):83?92.
［8］ Hopman A H, Kamps M A, Smedts F,et al.HPV in situ hybridization:impact of different protocols on the detection of integrated HPV ［J］. Int Cancer,):419?428.
［9］ Narimatsu R,Patterson B K.High?throughput cervical cancer screening using intracellular human papillomavirus E6 and E7 Mrna quantifica? tion by flow cytometry ［J］. Am J Clin Pathol,): 716?723.
［10］ Nieminen P,Vuorma S,Viikki M,parison of HPV test versus
conventional and automation?assisted Pap screening as potential
screening tools for preventing cervical cancer ［J］. BJOG,): 842?848.
［11］ Petry K U,Menton S,Mentom M,et al.Inclusion of HPV testing in routine cervical
screening for women above 29 years in germany: results for 8466 patients［J］.Br J Cancer,):.
［12］ Sankaranayanan R, Gaffikin L, Jacob M,et al. A critical assessment of screening methods for cervical neoplasia ［J］. Int J Gynecol Obstet, 2005, 89(Suppl2): S4?S12.
［13］ Morris B J.Cervical human papillomavirus screening by PCR:advant?ages of targeting the E6/E7 region ［J］. Clin Chem Lab Med,):.
［14］ Perrons C,Jelley R,Kleter B,et al.Detection of persistent high risk
papillomavirus
infections
with hybrid capture Ⅱ and SPF 10/LiPA ［J］. Clin Virol,):278?285.
［15］ Lin H,Moh J S,Ou YC,et al. A
simple method for the detection and genotyping
human papillomavirus using seminested polymerase chain reaction and reverse hybridization ［J］. Gynecol Oncol,):84?91.
［16］Gravitt P E,Peyton C,Wheeler C,et al.Reproducibility of HPV 16 and HPV 18 viral load quantitation using Taq Man real?time PCR assays ［J］. Virol Methods,?2):23?33.
［17］ Moberg M,Gustavsson I,Gyllensten U.Real?time PCR?based system for simultaneous
quantification of human papillomavirus types associated with high risk of cervical cancer ［J］. Clin Microbiol,):.
［18］ LO K W, Yeung S W, Cheung T H,et al. Quantitative analysis of human papillomavirus
type 16 in cervical neoplasm: a study in Chinese population ［J］. J ClinVirol,）：76?80.
［19］Sherman M E,Lorincz A T,Scott D R,et al. Baseline cytology, humam papillomavirus testing,and risk for cervical neoplasia:a 10?year cohort analysis ［J］.J Natl Cancer Inst,):46?52.
［20］ 黄庆,府伟灵,周玉,等.基因芯片对人乳头瘤病毒的快速检测和分型［J］.中华医院感染学杂志,):476?478.
［21］ Dunbar S A.Applications of Luminex xMAP technology for rapid, high?throughput multiplexed nucleic acid detection ［J］. Clin Chim Acta,?2):71?82.
［22］ 刘思瑶,丁显平,朱一剑,等.液相芯片技术在人乳头瘤病毒检测和分型中的应用［J］.四川大学学报（自然科学版）,）:.
&&订阅登记：
请您在下面输入常用的Email地址、职业以便我们定期通过邮箱发送给您最新的相关医学信息，感谢您浏览首席医学网！
耳鼻喉头颈外科
胸心血管外科
耳鼻喉头颈外科
胸心血管外科
副主任医师
副主任技师
副主任药师
副主任医师
副主任技师
副主任药师
论文写作技巧可以使用以下方式登录
怕传染性病去检查 hiv hsv hpv
匿名用户|女|0岁|
怕传染性病去检查 hiv hsv hpv
病情描述（主要症状、发病时间）：
戴安全套做爱 2天后 去做的抽血化验 hiv hsv hpv都是阴性 是不是我就安全了
当前健康困惑或病情描述：
治疗情况及预期治疗效果：
我是不是安全了
化验、检查结果：
hiv hsv hpv阴性
病情分析：
请根据患者提问的内容，给予专业详尽的指导意见。（最多输入500字）
指导意见：
请给出具体的运动，饮食，康复等方面的指导。（最多输入500字） 0/500
您好，欢迎登录
没有注册医生用户,请
可以使用以下方式登录
为保证患者权益，我们仅接受有资质的医学专业人士的回答，请您先等待医生认证审核结果。
3秒后跳转，请在专家回答区查看信息
有3名医生为您解答因不能面诊，医生的建议仅供参考
已帮助用户：36310
病情分析：
您好，带安全套同房，如果是全程带套，套子没有破和脱落，生殖器没有破溃和创口，也没有接触对方的生殖分泌物，那么感染上上述病原体的可能性不大的。只是在同房后两天检测抗艾滋病抗体，单纯疱疹病毒抗体和人乳头状病毒抗体检测为阴性的，这个时间还不够长，故检测为阴性的并不能说明没有感染的可能，这个单纯疱疹病毒抗体和人乳头状病毒抗体须在一个月后检测为阴性的，才能排除，抗艾滋病抗体须在三个月后检测为阴性的，才能完全的排除感染艾滋病的可能的。希望我的回答能带给您帮助，祝您健康快乐！ 提问人的追问
20:03:02但是那个医生说没有问题 还想问一下 染上那种病 身上会不会出现小疙瘩
已帮助用户：35879
病情分析：
病情分析：您好，你的检查结果是没有意义的，也是不能排除感染的。因为你检查的太早了，而且hsv hpv的血液检查结果是说明不了太大问题的。指导意见：首先有安全措施的情况下进行的性接触是比较安全的，是可以避免感染很多性病的，被感染的几率也是很低的，所以不要太担心的。其次，HIV需要在接触之后三个月去检查，是阴性才能排除。hsv hpv是需要观察症状，只要生殖器没症状就可以排除，血检意义不大。
祝您健康！医生询问：
已帮助用户：35404
病情分析：
病情分析：现在最早测试怀孕的方法有【1】是同房后15天的时间用晨尿做早孕试纸测试，【2】是同房后10天的时间去医院做HCG，【3】是月经推迟7天的时间用晨尿做早孕试纸测试确诊指导意见：你好，现在的情况注意休息和营养，不要吃辛辣的食物，你现在的情况是不可以确定，医生询问：
有关的更多问题，
擅长:内科护理综合
擅长:心理科综合
擅长:内科疾病
怕传染性病去...文章