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【求助】大鼠灌胃针用直头还是弯头的，一般几号啊
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大鼠灌胃针用直头还是弯头的，一般几号啊谢谢
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有直的有弯的，我用的弯的，可能弯的更符合颈部食管结构，所以我就用了弯的。几号的忘了，应该是贴咽后壁进，注意别进气管，好长时间了，记得不是很清楚了。当时大概是80多只大鼠，没有因为灌胃死过大鼠。实在不行可以等等，大鼠自己有时候也就把针咽下去了。
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谢谢，我知道了
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我用的弯头，16号，还比较顺手
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SD大鼠，200-250g ，直头，印象中是12号，大概6cm长吧。
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用10号到12号都可以。个人认为用直头比较好。顶着上颚正中往下走，注意压舌，手下用力要柔和，不要使强力，注意观察大鼠的反应。用直头的原因是直头没有方向性，这样在插入时右手可顶到注射针的助推处，插入后可直接推注药物；若为弯头，需要配合好针头的弯头方向与针头助推处的方向，否则若配合不好可能插入了还要调整方向，这样很短时间大鼠就会躁动，针头可能出来。直头难度不大。
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关于丁香园常用实验动物
常用实验动物
　　实验动物是经人工繁育,专用于科学研究、教学、生物制品或药品鉴定以及其他科学实验的动物。实验动物具有生物学特性明确、遗传背景清楚、对刺激敏感和反应性一致等特点。利用实验动物进行医学生物学研究，能保证动物实验的准确性、敏感性和可重复性，且仅用少量动物就能获得精确、可靠的动物实验结果。实验动物可以代替人类作为研究机体正常生命现象的对象。生理学是研究生命活动规律的科学，在生理学实验中需要以活的机体、器官或组织细胞作为实验观察对象，但实验又常会对机体造成不同程度的损害，甚至会危及生命，在人体不便施为。按照生物进化论的观点，人同各种动物有许多基本相似的构造和功能，在动物身上获得的生理知识可以推用到人体，来探讨人体的某些生理功能。因此，实验动物可作为人类的替代者。
常用动物的种类、特点及选择
　　实验动物的种类很多，正确选择合适的实验动物是保证实验成功的关键。
一、实验动物选择的基本原则
　　1．选择与人类具有某些相似性的实验动物；
　　2．选用解剖、生理特点符合实验目的要求的实验动物；
　　3．选用标准化实验动物，即指在微生物学、遗传学、环境和营养等方面均符合控制标准的实验动物，教学示范一般选用一级（普通）动物；
　　4．选用与实验要求相适应的实验动物规格
(指年龄、体重和性别的选择)。
　　另外，选择实验动物还要符合经济节约，容易获得的原则。
　　生理学实验中常用的动物有：蛙（蟾蜍）、家兔、小白鼠、大白鼠、豚鼠、鸽子、猫和狗等。
二、几种常用实验动物的特点及用途
　　1．青蛙和蟾蜍二者均属两栖纲、无尾目类动物。其心脏在离体情况下可保持较长时间的节律性跳动，多用于研究心脏的生理、药物对心脏的作用等。蛙的体型小，神经肌肉标本易于制备，其腓肠肌和坐骨神经是研究外周神经、运动终板等生理功能的理想材料，且价格低廉，易于获得。
　　2．家兔属于哺乳纲，啮齿目，兔科。性情温顺、安静，是生理学实验教学中较多采用的实验动物。家兔颈部有减压神经独立分支，纵隔由两层纵隔膜组成，将胸腔分为左右两部分，互不相通，适用于急性心血管实验及呼吸实验；家兔的肠管长、壁薄，对儿茶酚胺类反应灵敏，可进行小肠平滑肌的生理学特性的观察；也可用于卵巢、胰岛等内分泌实验。
　　3．小白鼠属于哺乳纲，啮齿目，鼠科。便于人工繁殖，价格低廉，适用于动物需要量较大的实验。
　　4．大白鼠属鼠科。其垂体、肾上腺系统发达，应激反应灵敏，适用于内分泌研究；也可用大白鼠迸行胆管插管收集胆汁，或从胸导管采集淋巴液等；还可用大白鼠进行高级神经活动实验。
　　5．豚鼠（荷兰猪）属于哺乳纲，啮齿目，豚鼠科。性情温顺，胆小易惊，很少咬伤实验操作人员。豚鼠耳壳大，药物易于进入中耳和内耳，常用于内耳迷路等实验研究；或用于离体心脏、子宫及肠管的实验。
　　6．鸽子属于鸟纲、鸽形目、鸠鸽科。其小脑、三个半规管以及听觉和视觉部很发达，对姿势的平衡反应敏感，常用来观察迷路与姿势的关系；也可用于观察大脑半球的一般功能。
　　7．猫属于哺乳纲,食肉目,猫科。其循环系统发达，血压稳定，血管壁坚韧，适用于循环功能的急性实验；猫的大脑和小脑发达，其头盖骨和脑的形态固定，常用来做去大脑僵直、姿势反射等神经生理学实验。
　　8．狗哺乳纲、食肉目、犬科。狗的嗅觉、听觉特别灵敏，其嗅觉能力是人的1200倍，听觉比人灵敏16倍，同时具有发达的血液循环和神经系统，是目前教学和基础医学研究中最常用的动物之一。尤其是在血液循环、消化和神经活动的实验研究中，狗的应用更具有重要意义。
三、几种实验动物的部分生理指标
　　在生理学实验中，经常要观察动物的各种生物学指标的变化情况，这就需要对实验动物的正常生物学数据有所了解。常用实验动物的部分生理指标具体数据见表7-1。
表7-1几种实验动物的部分生理指标
(37.2－38.8)
(37.8－38.7)
(38.2－38.9)
(38.5－39.5)
(37.5－39.0)
(422－549)
(324－341)
(297－350)
(123－304)
(占体重的﹪)
19.3－24.5
　　注：Ps为收缩压；Pd为舒张压。
第二节实验动物的编号及性别鉴别
一、实验动物的编号
　　实验中常用的动物编号方法有：
　　1．染色法是用化学药品在动物明显部位被毛上进行涂染，并用不同颜色来区别各组动物，是实验室最常用且容易掌握的方法。给大白鼠、小白鼠、豚鼠背部标记，可用黄色苦味酸染料；给家兔、猫等动物标记，最常用硝酸银溶液。
　　2．挂牌法给狗、猫等大动物挂牌编号，可将铝制号码牌固定在耳、腿、颈部等处。
　　3．被毛剪号用剪刀在动物背部剪毛、标记。
　　4．笼子编号把笼号作为个体号，代替动物编号。
二、实验动物的性别鉴别
　　1．青蛙和蟾蜍用拇指及食指捏住躯干两侧提起动物时，雄性的通常会发出叫声，雌的不会叫；在雄性蛙的前肢拇指和食指蹼上有棕色或黑色小突起，即婚垫，雌性蛙则无；将动物提起时，前肢作怀抱状的是雄性，呈伸直状的为雌性。
　　2．家兔用拇指和食指按压生殖器部位，在雄兔，可见一圆孔中露出稍向下弯曲的阴茎
(幼年雄兔只见有凸起物，即是阴茎)，雌兔则是一条朝向尾部的长缝，呈椭圆形的间隙，即阴道开口，此间隙越向下越窄；雌性有乳头。
　　3．大白鼠和小白鼠根据动物肛门与生殖器之间的距离来区分，距离远的为雄性，近的为雌性；雌鼠可见性器官部位有开孔
(阴道口)，腹部有明显的乳头；雄性可见阴囊内睾丸下垂，天热时尤为明显。
　　4．豚鼠用一手抓住动物颈部，另一手扒开靠近生殖器的皮肤，雄性动物在圆孔处露出性器官的突起，而雌性动物则为三角形间隙；另外，成年雌性有两个乳头。
第三节实验动物的捉持和固定方法
&一、青蛙和蟾蜍
　　左手握蟾蜍或青蛙，使其俯卧与手掌中，以食指与中指夹住其两前肢，无名指与小指夹住两后肢，拇指按压头部前端；在麻醉或破坏脑脊髓后仰卧于蛙板上，用大头针或蛙腿夹固定四肢。
　　右手抓住家兔颈部皮肤，将其轻轻提起，用左手托住其臀部，使家兔的身体重量承托于手中，然后按实验要求加以固定。因家兔的耳朵非常敏感，不要抓兔耳提取家兔，也不要抓取家兔的四肢，家兔脚爪锐利，其挣扎时可能会抓伤实验者。
　　1．头部的固定做各种手术时，可将家兔麻醉后用粗棉绳拴紧其上门齿，然后绑在实验台铁柱上。该法适于仰卧位固定头部。实验取俯卧位固定动物时，可选用兔头夹固定。
　　2．四肢的固定家兔取仰卧位固定时，可用粗棉绳或布带打好扣结
，将活结端缚扎于踝关节上部，前肢平直置于躯干两侧，将绑扎两前肢的带子从家兔背后交叉穿过，压住对侧前肢，分别缚于手术台两侧木钩上，两后肢左右分开，绑扎带另一端分别缚于手术台两侧木钩上。若俯卧位固定时，前肢缚绳无须左右交叉，分别将四肢缚绳直接固定于实验台两侧固定钩上即可。
三、小白鼠
　　先用右手抓住鼠尾部将鼠提起，放在粗糙的台面或鼠笼盖上，向后轻拉鼠尾，在其向前爬行时，用左手拇指和食指沿其背部向前迅速捏住小鼠的两耳和颈后部皮肤，使其不能转头，然后将鼠体置于左掌心中，翻转左手，右手拉住小鼠尾部，将后肢拉直，并以左手无名指和小指压紧尾部和后肢，使小鼠呈一条直线。熟练者也可采用左手一手抓取法。抓取时须注意，用力过轻小鼠头部能够反转咬伤实验者的手，过分用力则会使小鼠窒息或颈椎脱臼。进行手术时，可使用固定板固定。将麻醉后的小鼠仰卧或俯卧于固定板上，用棉线绳缚住小鼠四肢，线绳另一端系于固定板左右两侧的钉子上；在上颚切齿上栓一线绳系在前方边缘的钉子上，以达到完全固定。
四、大白鼠
　　大白鼠的固定方法基本与小白鼠相同，但最好带防护手套进行。大鼠个头较大时，应靠近其尾巴基部抓持，用左手从背部中央到胸部捏住。另一种方法是，以右手抓住鼠尾，左手带防护手套或用厚布盖住鼠身作防护，握住其整个身体，并固定其头部防止被咬伤，但不要用力过大，勿握其颈部，以免窒息死亡。手术时的固定，同小白鼠，或用特制的固定架固定。
　　先用右手掌轻轻扣住豚鼠背部，抓住其肩胛下方，以拇指和食指抓住颈部将其轻轻提起。体重较大或怀孕的豚鼠，可用左手托其臀部。固定方法基本同大、小鼠，用木制固定板和线绳固定。豚鼠生性胆小，当其受惊时，会在笼子内急转，易造成自伤。故抓取时要稳、准、快，不能太粗野；不能抓其腰腹部，防止造成肝破裂而死亡。
　　先用特制的长柄钳夹住其颈部，将其按压在地，然后再按实验要求固定之。
　　1．绑扎狗嘴先将棉绳打一空结圈，将绳圈套住狗嘴后，在嘴上方拉紧绳结，然后绕到嘴下方打第二个结，最后绕至颈后打第三个结固定。捆绑狗嘴的目的只是防止咬人，故打结时切勿过紧，以免激怒或损伤动物。当动物进入麻醉状态后应立即松绑。因为此时动物只能依靠鼻子呼吸，鼻腔积存的粘液可能导致动物窒息甚至死亡。使用易引起呕吐的麻醉药物时尤应注意。
　　2．头部固定头部的固定姿势视实验要求而定，一般做颈、胸、腹、股部实验，多采用仰卧位。做脑、脊髓部实验，多采取俯卧位。常用狗头夹固定狗头。狗头夹为一圆铁圈，上面横有一根略弯的铁条，与螺旋铁棒相连；下面有一平直并可抽出的铁条。固定时先拉出狗舌，将铁圈套住狗嘴，再将平铁条插入上下颌间，旋紧螺旋铁棒，使弯形铁条恰好压在狗鼻梁
(俯卧位)或下颌上(仰卧位)，最后将铁圈的铁柄固定于实验台上。
　　3．四肢固定在头部固定前、后进行均可。方法基本同家兔。
第四节实验动物的给药途径和方法
一、静脉注射法
　　1．静脉注射法分类：因实验所用动物的不同，静脉注射血管部位也不同，一般静脉注射可包括以下几种。
耳缘静脉注射法耳缘静脉注射主要用于家兔、豚鼠等。注射方法：固定兔耳，找到耳的外侧缘皮下静脉，拔去注射部位的毛，用酒精棉球涂擦耳缘静脉部位皮肤，并用手指轻轻弹动该处（或先用一动脉夹在静脉近心端夹闭静脉），使静脉充盈。然后左手持平耳缘部，右手持注射器从血管远端刺入（针头与血管呈近30°夹角），沿血管平行方向进针约1cm，回一下血，放松对静脉近心端的压迫，缓慢推入药液。
前肢皮下头静脉或后肢小隐静脉注射法主要用于狗、豚鼠等。前肢皮下头静脉位于前肢内侧的皮下，后肢小隐静脉位于后肢的外踝部。注射方法：先剪去注射部位的毛，用碘酒和酒精消毒皮肤，在静脉的近心端处用橡皮带扎紧，使血管充盈。将针头刺入血管旁的皮肤，再与血管平行刺入血管。回血后，松开橡皮带，缓慢注入药液。
尾静脉注射法主要用于大、小白鼠等。注射方法：把动物固定在特制的固定器中，露出尾部，剪去左右两侧尾静脉部位的毛。将鼠尾浸于45℃左右的温水中加温或用75﹪酒精棉球反复涂擦尾部，以使静脉血管充分扩张、表皮角质软化。左手拉直鼠尾，在鼠尾左或右侧选择扩张明显的静脉血管并使其向上。右手持注射器，在血管靠近尾端1/4处使针头与血管成30°夹角，轻轻刺入。再将针头稍抬起，在尾静脉血管内平行进针，回一下血后，用左手拇指、食指和中指固定针头与鼠尾，右手以适当速度推注药液。一般采用4号针头进行注射。A
前肢皮下头静脉注射法；B 耳缘静脉注射法；C 腹腔注射法；D
淋巴囊注射法（胸部）．
　　2．静脉注射注意事项
静脉注射开始前，应先仔细核对药物名称，准确吸取药量。排尽注射器内的空气，避免其进入静脉内形成气栓。
静脉注射要尽量从相应部位的远端血管处开始，假如注射失败，应拔出针头从靠近原注射点的近端部位再次进针，直至注射成功。如进针后回抽针栓不见回血，或推注时阻力较大且局部肿胀发白出现皮丘，便说明针头末刺入静脉血管。
注射过程中应减少动物注射部位的活动，防止针头滑脱。若动物挣扎应暂缓推注，固定好针头，待动物安静后，再继续给药。
静脉注射给药的速度要缓慢均匀，以免扰乱循环和呼吸系统的生理功能。
注射完毕，用一棉球按住针眼，拔出针头，继续压迫片刻，以防针眼处出血。
二、腹腔注射法
　　腹腔注射多用于小鼠、大鼠和豚鼠等。注射方法：用大、小白鼠做实验时，左手固定动物，使其腹部向上，右手持注射器将针头从下腹部腹白线偏左侧插入皮下，使针头向头部方向推进几个毫米，再以45°角穿过腹肌刺入腹腔内，固定针头，回抽针栓，如无回血或尿液，便可缓慢推注药液。可用5号半注射针头。注射时应使动物取头低位，使内脏尽量移向上腹部，以避免伤及内脏。较大动物如家兔或狗等，腹腔注射的进针部位为下腹部的腹白线旁开1－2cm处。
三、皮下注射
　　皮下注射最常用于小白鼠。注射部位多在颈背部。注射方法：以左手拇指和食指提起颈背部皮肤，右手持注射器，注射针头与头部皮肤平行，从头部方向进针，插入皮下。然后缓缓注入药液。一般选用5号半注射针头。狗、猫皮下注射部位多在大腿外侧，豚鼠在后肢大腿的内侧或小腹部，大白鼠在左下腹部，兔在背部或耳根部。
四、肌内注射法
　　肌内注射应选择肌肉发达、毛细血管丰富、无大血管通过的部位，一般多选臀部或股部。注射方法：先剪去注射部位皮肤的被毛，右手持注射器，将针头垂直迅速刺入肌肉，回抽针栓，如无回血即可推注药液。注射完毕，用手轻轻按摩注射部位，以促进药液吸收。
五、淋巴囊注射法
　　淋巴囊注射主要用于蛙类。蛙类皮下有数个淋巴囊，注入药物极易吸收。注射部位一般多选用腹部和胸部淋巴囊。方法如下：
　　1．腹部淋巴囊注射左手固定蛙，使其腹部朝上。从大腿上端刺入，穿过大腿肌肉和腹壁肌层，浅出腹壁皮下，进入腹部淋巴囊，然后注入药液。
　　2．胸部淋巴囊给药先将针头刺入口腔，使之穿过下颌肌层进入皮下，再进入胸淋巴囊内，注入药液
(图7-3D)。一次最大注射量为而1ml/只。经肌肉或粘摸刺入淋巴囊的目的是为了防止药液的外溢。
六、几种动物不同给药途径的常用注射量
　　不同动物不同的给药途径有不同的注射量，实验时须区别对待，具体用量详见表7-2。&
表7-2几种动物不同给药途径的常用注射量
实验动物的麻醉&
　　在实验中，为防止动物挣扎，保证实验的顺利进行，在施行手术前，需用麻醉剂将动物麻醉。麻醉方式和麻醉剂的选用，应视具体的实验要求、动物种类而定。
一、麻醉方法
　　1．局部麻醉法局部麻醉包括表面麻醉、浸润麻醉和阻断麻醉等。其中，浸润麻醉最为常用。浸润麻醉方法：根据实验操作要求的深度，将1﹪－
2﹪的盐酸普鲁卡因按皮下、筋膜、肌肉、腹膜或骨膜的顺序依次分别注入，阻断手术部位的神经冲动传导，使疼痛消失。适用于中型以上的动物。
　　2．全身麻醉法
吸入麻醉法：先将蘸有乙醚的棉球放入玻璃罩内，然后投入待麻醉动物，经过1－2分钟左右，动物逐渐失去运动能力。使用该法麻醉时间不可太长，麻醉时要密切观察，防止动物缺氧、窒息或麻醉过深而死亡。该法适用于大、小白鼠的短时间麻醉。较大的动物也可用，但需要使用麻醉口罩等。
注射麻醉：经腹腔或静脉注射麻醉，其操作简便，较常采用。腹腔给药麻醉法多用于小鼠、大鼠和豚鼠等动物。静脉给药麻醉法则多用于兔、狗等较大的动物。各种动物的静脉注射部位及方法见本章第四节内容。
二、动物麻醉的注意事项
　　1．准确计算麻醉剂量所有麻醉药使用过量均可引起中毒，故应特别注意麻醉药的使用剂量及用药途径。在严格按照体重计算麻醉剂量的同时，还要考虑动物对药物耐受性的个体差异。
　　2．缓慢注射，并随时观察动物情况注射过程中，注意观察肌肉紧张性、角膜反射、呼吸频率和夹痛反应等指标。当这些反应明显减弱或消失时，应立即停止注射。
　　3．注意保温动物在麻醉期体温下降，要采取保温措施。为随时观察体温的变化，可在动物的肛门插入体温计。在寒冷的冬季做慢性实验时，在注射前应将麻醉剂加热至动物体温水平。
　　4．万一麻醉过量，应积极抢救可根据不同情况，施行人工呼吸、注射呼吸兴奋剂或强心剂等抢救措施。
ww./jpkc/jpkc_slx/shiyanzhidao6.htm
以上网友发言只代表其个人观点，不代表新浪网的观点或立场。利用第二代丙烯酸酯胶粘剂制作大小鼠灌胃针头--《实验动物科学与管理》1999年01期
利用第二代丙烯酸酯胶粘剂制作大小鼠灌胃针头
【摘要】：以往大小鼠灌胃使用的灌胃针头，是用输血针或小号腰穿针头，将其尖端磨齐，用焊锡在针头周围焊一圆头即成灌胃针头。使用时将灌胃针头插入动物口中，沿咽后壁徐徐插入食道。上述方法制作的灌胃针头的缺点是：１．制作麻烦，需要电烙铁、焊锡、强水、沙轮等工具和材料，甚...
【作者单位】：
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【分类号】：R318.08【正文快照】：
以往大小鼠灌胃使用的灌胃针头，是用输血针或小号腰穿针头，将其尖端磨齐，用焊锡在针头周围焊一圆头即成灌胃针头。使用时将灌胃针头插入动物口中，沿咽后壁徐徐插入食道。上述方法制作的灌胃针头的缺点是：１．制作麻烦，需要电烙铁、焊锡、强水、沙轮等工具和材料，甚至
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【讨论】咨询一下什么样的是四号针头
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麻烦问一下4号针头是什么样的呀？临床哪个科室用这种针头呢？谢谢！
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小儿科的小头皮针
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小儿科的小头皮针
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他们说小儿科的头皮针是五号半的
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不同型号的注射器，针头规格各有不同，可以看一哈针头规格，注射器包装袋上有注明，不同颜色代表各自型号。
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奥，好的，谢谢！
关于丁香园哪里有生产实验室用针，动物实验用针，麻醉针之类的_百度拇指医生
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